NY/T 1443.2—2007 小麦抗病虫性评价技术规范 第2部分:小麦抗叶锈病评价技术规范[高清PDF]

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标准部分原文

(*注：以下内容并未完全按照原文进行排版，且信息并不完全，也未经过严格校对，所以仅供参考！建议【不要直接作为从业依据】！具体信息还请阅读标准原文PDF。)

1范围

本标准规定了小麦抗叶锈病鉴定技术和抗性评价方法。

本标准适用于普通小麦（包括选育品种/系、地方品种、特殊遗传材料、近等基因系、重组自交系、DH 群体）、杂交小麦、转基因小麦、其他栽培小麦种、野生小麦、小麦野生近缘种对小麦叶锈病抗性的田间鉴 定和评价。

2术语和定义

下列术语和定义适用于本标准。

2.1

抗病性 disease resistance

植物体所具有的能够减轻或克服病原物致病作用的可遗传性状。

2.2

慢锈性 slow rusting

在适于病害发生的环境条件下,寄主植物和病原物相互作用表现侵染型为3型〜4型的感病反应, 但田间病害发展速度相对较慢，终期病情指数低于30o

2.3

致病性 pathogenicity

病原物所具有的破坏寄主和引起病变的能力。

2.4

人工接种 artificial inoculation

在适宜条件下，通过人工操作将接种体放于植物体感病部位并使之发病的过程。

2.5

病情级别 disease rating scale

植物个体或群体发病程度的数值化描述。

2.6

抗性评价 evaluation of resistance

根据采用的技术标准判别寄主植物对特定病虫害反应程度和抵抗水平的描述。

2.7

分离物isolate

采用人工方法从植物发病部位获得的在特定环境条件下培养的病原物。

2.8

接种体 inoculum

能够侵染寄主并引起病害的病原体。

2.9

生理小种 physiological race

病原菌种、变种或专化型内的分类单位，各生理小种之间形态上无差异，但对具有不同抗病基因的 鉴别品种的致病力存在差异。

2.10

鉴别寄主 differential host

用于鉴定和区分特定病原菌生理小种或菌系的一套带有不同抗性基因的寄主品种。

2.11

普遍率incidence

或称发病率,发病植物体单元数占调查植物体单元总数的百分率,用以表示发病的普遍程度。在本 标准中，植物体单元为叶片。

2.12

严重度severity

发病植物单元上发病面积或体积占该单元总面积或总体积的百分率，亦可用分级法表示，即将发病 的严重程度由轻到重划分出几个级别，分别用一些代表值表示,说明病害发生的严重程度。

2.13

病情指数 disease index

全面考虑发病率与严重度两者的综合指标。当严重度用分级代表值表示时,病情指数计算公式：

DI =力（X, - S,）/力（X, - SQxlOO

/ = 0i = 0

其中,DI为病情指数"•为病级数（0〜n）, Xi为，级的单元数，S］为i级严重度的代表值，为严 重度最高级值，E为累加符号，从0级（无病单位）开始累加。

当严重度用百分率表示时,则用以下公式计算：

DI = IXSXW0

其中"为普遍率,8为平均严重度。

2.14

侵染型 infection type

根据小麦过敏性坏死反应有无和其强度划分的病斑类型，用以表示小麦品种抗叶锈病程度，按

0、；、1、2、3、4六个类型记载，各类型可附加“ + ”或"”号,以表示偏重或偏轻。

2.15

潜育期 latent period

病原菌侵染小麦建立寄生关系后到被接种小麦表现症状之前的这一时期称为潜育期。

2.16

小麦叶锈病 wheat leaf rust or brown rust

由小麦叶锈病菌 Puccinia triticina ( = P. recondita Roberge ex Desmaz.f・sp・ tritici)引起的以叶部 产生铁锈状病斑症状的小麦病害。成株期小麦叶锈病主要为害小麦叶片，产生疱疹状病斑，很少发生在 叶鞘及茎秆上。夏抱子堆圆形至长椭圆形,橘红色，比秆锈病小，较条锈病大,呈不规则散生,在初生夏 抱子堆周围有时产生数个次生的夏抱子堆，一般多发生在叶片的正面，少数可穿透叶片。成熟后表皮开 裂一圈，散出橘黄色的夏抱子;冬抱子堆主要发生在叶片背面和叶鞘上，圆形或长椭圆形，黑色，扁平，排 列散乱，但成熟时不破裂。有别于秆锈病和条锈病。

3病原物接种体制备 3.1小麦叶锈菌分高

采集具有典型叶锈病斑的小麦发病叶片置于铺有滤纸的培养皿中，平展叶片，浸泡1 6h〜2 4h,用

刀片轻刮发病病斑，将刮下的夏抱子涂抹于感病品种郑州5389（或铭贤169）上,用清水均匀喷雾，置于 （20±5）€的保湿间内黑暗保湿18 h~24 h, 14 d后观察发病情况,获得分离物。分离物经形态学鉴定 确认为 Puccinia triticina （ = P. recondita Roberge ex Desmaz.f ・ sp. tritici）后,进行分单弛纯化，经致病 性测定后，扩繁保存备用。

3.2小麦叶锈菌分离菌株的生理小种鉴定

将用于抗性鉴定接种的分离物首先进行生理小种鉴定。生理小种鉴别寄主采用一套以Thacher为 背景的分别含有 Lr 1. Lr2a .Lr2c.Lr3. Lr3^ .Lr9. Lr 11. Lr 16. Lr 17. Lr24. Lr26 和 L〃30 共 12 个 抗病基因的小麦材料，根据叶锈菌与鉴别寄主相互作用产生的抗病或感病模式，划分出不同的生理小种 或致病类型（见附录A.2.3）。

3.3小麦叶锈菌繁殖和保存 3.3.1育苗

叶锈菌夏弛子在郑州5389（或铭贤169）±繁殖。即选用直径为10 cm,高度为10 cm的花盆，装富

含有机质的土壤，每盆播种20粒〜25粒健康饱满感病品种郑州5389（或铭贤169）,覆土 1 cm,之后将

育苗钵置于盛水的育苗盘内，使水从育苗钵底部缓慢吸收至土体表面完全湿润，移出，置于（20±5）V温 室内培养6d〜8d,待用。

3.3.2接种

接种在操作台（或接种间）内进行。首先用喷雾法净化空气，再用75%的乙醇对操作台（接种间）、 接种针和手进行消毒。将待接种幼苗放在操作台（接种间）上，在幼苗转移时要套袋或采取其他措施防 止空气中的弛子污染;写标签，记录接种日期及接种的菌种编号;用手蘸取小麦叶锈菌夏抱子（或者从标 样保湿后刮取的少量夏抱于），接种到无菌苗的第一叶片上。

3.3.3保湿

将接种后的幼苗置于接种桶中，用清水喷雾，使叶片表面附着一层均匀的雾滴，密封，在（20±5）r 黑暗条件下保湿18h~24 ho

3.3.4菌种繁殖

初繁:待无菌苗郑州5389（或铭贤169）第一叶片全部展开后，从液氮中取岀装有菌种的安甑瓶，在 40C温水中活化5 min〜7 min,之后置于盛有湿润滤纸的培养皿中（相对湿度大于50%）于（20±5）C黑 暗条件下水化10h〜12h。

初繁釆取涂抹法。此法主要在繁殖少量菌种或接种少量鉴定材料时应用。从指形管中取出少许叶 锈菌夏如子放在洁净的毛玻璃上，用滴管加入少量水，用接种针将叶锈菌夏抱子与水拌匀备用。另外, 用洁净的手指蘸清水或0.05%吐温20（Tween 20）水溶液将麦苗的叶片摩擦数次,去掉叶片表面的蜡质 和茸毛，以利于菌液吸附于叶面上。用消毒过的接种针蘸上调制好的抱子悬浮液，涂抹于麦叶正面，插 标签,记录接种日期及所用菌种。接种后把麦苗随即放入保湿桶中，再喷雾清水，使麦苗和保湿桶的内 壁沾满雾滴，但喷雾不能过量。喷雾后，马上盖严塑料薄膜或玻璃，保湿桶置于（20±5）t：黑暗条件下保 湿 18h~24 ho

在接种不同生理小种时，接种用的一切用具都要先行消毒，防止可能发生的污染。

扩繁:可采用涂抹法、扫抹法、喷（撒）粉法或喷雰法接种。

扫抹法:先将一叶期的郑州5389（或铭贤169）置于接种桶内，叶面喷0.05%的Tween 20水溶液, 然后将发病幼苗倒置，使病叶片在接种桶内的无歯苗上扫抹3次~5次，再用0.05%的Tween 20水溶 液喷雾，使叶片表面附着一层均匀的雾滴，密封，置于（20±5）C黑暗条件下保湿18h〜24h。

喷（撒）粉法:小喷粉器（或用双层纱布封口的玻璃试管）经消毒、干燥后，按20〜30： 1的比例均匀混 合干燥滑石粉与叶锈菌夏砲子。接种前，用手蘸清水将叶片拂擦数次，以去掉叶片蜡质,用喷雾器在麦 苗上均匀喷上雾滴,随即用喷粉器（或用双层纱布封曰的玻璃试管）将上述稀释的抱子粉均匀地喷洒（或

（以上是摘录部分标准内容，更多信息还请参考原文PDF）

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