LY/T XXXXX—XXXX 白蜡属品种鉴定技术规程SSR分子标记法[高清PDF]

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标准部分原文

(*注：以下内容并未完全按照原文进行排版，且信息并不完全，也未经过严格校对，所以仅供参考！建议【不要直接作为从业依据】！具体信息还请阅读标准原文PDF。)

1范围

本文件确立了利用SSR指纹图谱对白蜡属品种鉴定的程序。

本文件适用于以白蜡属（Fraxinus）品种幼嫩组织（叶片，芽等）为材料，利用SSR指纹图谱对白 蜡属品种的鉴定。

2规范性引用文件

下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文件, 仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本 文件。

LY/T 2745仁用杏品种鉴定技术规程SSR分子标记法

3术语和定义

LY/T 2745界定的以及下列术语和定义适用于本文件。

3. 1

待检品种test cultivar

待鉴定的白蜡属品种，由送检人提供。

3. 2

简单重复序列 simple sequence repeats

基因组中由1个至6个核昔酸组成的DNA串联重复序列，简称SSR。

3. 3

基因型频率 genotype frequency

群体中某一位点特定基因型个体数占全部个体数的百分比。

4原理

本文件选用通过转录组测序获得的17对高度多态性的EST-SSR引物，用于白蜡属品种的遗传鉴定。 在检测过程中，采用真实品种的DNA模板做为对照品种，从待检苗木中.抽样做为待检品种。利用SSR引物 进行扩增，将待测品种与对照品种的SSR指纹对比结果进行分析，若侍检品种匕対照品种在任一引物扩 增位点上基因型不同，则可判定待检品种与标准品种不是同一品种。当不同引物扩增位点上基因型都相 同时，可根据标准样品在不同位点上的基因型频率乘积,计算出待检品种与对照品种是同一品种的概率。

5主要仪器和设备

仪器设备见附录A。

6试剂与溶液

主要试剂与溶液配置方法见附录B。

7操作程序

7.1样品

选用白蜡属不同品种幼嫩叶片、嫩芽等组织0.2 g,提取基因组DNA。本文件选用已通过国外和国内 审（认）定的白蜡优良品种，见附录C。

7.2 DNA的提取、纯化及定量

7.2.1 CTAB 法提取 DNA

CTAB法提取DNA的步骤如下。

a）将配制好的CTAB提取缓冲液置于65 °。的水浴锅中预热30 min,氯仿:异戊醇（24:1 ）、无水乙 醇、70%乙醇置于-20 °C冰箱预冷备用，研钵需提前预冷，使用前再用少量液氮预冷。

b）取0.4 g〜0.5 g白蜡幼叶，搁置于研缽中，加入约30 mL的液氮研磨至粉末状，迅速转入2 mL离 心管中，加入600卩L 2%的CTAB提取液（含2%B-巯基乙醇），充分混匀。在65 C的水浴锅中 水浴30 min，其间轻轻颠倒3〜4次。

c）冷至室温后加入600卩L的氯仿：异戊醇（24： 1）抽提10min,其间不停地轻轻地摇动，冷却至 室温，在］2 000 r/min 离心 10 min。

d）将上清液（约500 UL）转入另一离心管中，加等体积氯仿：异戊醇（24:1）重复步骤c）。

e）取出上清液并移到另一个干净的1. 5mL的离心管中，再加0. 7体积的异丙醇并颠倒混匀沉淀DNA, 出现絮状DNA, -20 °C放置lh,观察沉淀生成。

f）8000 rmp室温离心5min,倒掉上清液，沉淀用1 mL75%的酒精洗涤两次，超净工作台静置乙醇 挥发干净。

g）待DNA风干后以0不宜过分干燥，否则极难溶解），用50 ul的TE pH 8.0或超纯水溶解，4 °C 放置6h〜12h^其充分溶解。

h）加入2 uLRNA酶 1 良/mL’JZ-C水浴 1 h。

i）等体积苯酚-氯仿-异戊醇去蛋白一次，氯仿-异戊醇去蛋白一次，上层水相中加入1/10体积的3 M NaAc,两倍体积的无水乙醇，視券20 °C放置1到2h,离心，干燥DNA,溶于30 u L TE中； -80 °C保存备用。

7. 2. 2 DNA定量和质量检测

DNA定量和质量检测的步骤如下。

a）取2 uLDNA用微量核酸蛋白检测仪检测，可以直接读出DNA浓度和A260/A280的比值，比值在 1. 8〜2.。之间符合要求。

b）另取取3 uLDNA加等体积0.2%。的漠酚蓝，在0.8%琼脂糖凝胶上电泳15min^20min,稳压100 V, 电泳缓冲液为1XTBE, 325 nm紫外灯下观察，照相，通过与标准溶液的荧光进行比较估测未知 DNA的浓度。

c）植物总DNA样品呈现一条相对分子量较大而迁移速率很小的清晰条带。

7.3 SSR分析步骤

SSR引物序列表见附录D。

PCR反应体系为10卩L,具体见表1。

表1 PCR扩增体系

试剂

浓度

一个反应所需用量

uL

Mix

2倍

5

Primer(F/R)

10 uM

0.1/0. 1

DNA

20 ng/ uL

1

H2O

—

3.8

7.3.3反应液加入到PCR板后，将PCR板用乳胶盖盖好后放入PCR仪中，PCR的反应程序如下。

a）95 °C 预变性 5 min。

b）95C变性30 s, 52 C退火30 s, 72 C延伸30 s, 95 C变性30 s, 50 C退火30 s, 72 C延伸30 s,共20个循环。

c）最后72 C延伸10 min,4 C时10 min终止反应。

7.3.4 PCR产物变性步骤。

a）PCR产物用双蒸水稀释10〜20倍。

b）取PCR产物0.3卩L、分子量内标0.5卩L和去离子甲酰胺9.5卩L混匀加入PCR板。

c）在PCR仪上运行变性程序：95 °C变性5 min, 4 °C冷却后离心，IXBuffer缓冲液上机检测。

7. 3. 5 PCR产物检测步骤。

a）PCR产物检测采用DNA基因分析仪。

b）毛细管的空间校正（新安装的毛细管只要进行一次校正即可）。选择空间校正程序，根据毛细 管是否己经灌胶，选择相应的程序，然后点击开始。空间校正后每个毛细管会有一个峰图，如 果每个毛细管峰值大小基本一致，且每个峰上都有一个“十”，则代表校正通过。

c）仪器的光谱堡:正（新安装的毛细管只要进行一次校正即可）。取5 gL Multi-Capillary DS-30 加入195 gl高纯度甲酰胺，混匀后分装到96孔板A1-H1和A2-H2孔，95 °C变性5 min,放冰上迅 速冷却。利用光谱校正程序进行光谱校正，选择校正所用的样品型号，然后点击开始校正结束 后通过校正文件亩枭判断建否正确。根据DS-30中的标样，如果峰图颜色的顺序是蓝、绿、黄、 红，并且峰图清晰、峰型一致则代表光谱校正通过。

d）采用片段分析程序，选择片段分析模式以及光谱校正所用试剂盒的类型。创建一个自动分析模 板，填写分析样品的名称，选择样品的'娜、内标类别、分析方法等。将变性好的PCR产物盖 上仪器自带的PCR板盖后，放入仪器中，用软件甲将PCF叫链接到仪器，点击开始进行基因型分 型。

8待检样品检测的一般程序

对待检品种和对照品种以附录D中的引物进行标记检测，获得待检品种和对照品种在这些位点的等 位变异数据，利用这些数据进行比较，判定方法如下。

a）随机选取一引物，对待检品种进行PCR扩增。

（以上是摘录部分标准内容，更多信息还请参考原文PDF）

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